小鼠静脉可视尾注固定器/大小鼠尾静脉注射固定器/小鼠可视固定

主要技术参数：

快装鼠筒可盛装17-40g的小鼠

0.5w led 黄光灯

五倍放大镜

配带压块释放脚踏开关

电源适配器：输入：ac100-220v   50hz

               输出：dc  12v 2a

整机尺寸：220*140*125cm

整机重量：1.8kg

产品开发背景：

大、小鼠尾静脉给药（以下简称尾注）是生理、药理、毒理实验中最普通地日常工作，这虽然是一项日常工作，但就新手来说并不是一件简单轻松的工作，往往由于操作不当，药物没能注射到动物的尾血管内，而使动物废弃，影响了实验结果。尾注的操作是要有一定的技术和技巧的，是需要一定的时间进行不断的实践、经过一个长时间不断地练习过程才能掌握的事情，这样无形中就给实验人员带来更多的工作压力和占用更多的宝贵时间。为了更好地让实验人员全心地投入到实验室工作中，从尾注的烦恼中解放出来，我们经过三年的潜心研究，研制出一款小鼠尾注器。这是一种用创新思维、创新理念、精心设计研制的小型设备。并以它新的操作方式让使用者耳目一新。

大小鼠静脉可视尾注固定器采用压赶方式，把鼠尾根部静脉血管中的血，赶压到鼠尾梢部，使鼠尾的后半部分血管充分充盈。充盈的血管直径较平常的血管直径增粗了约40％，加上动脉的继续供血，血管会变更粗，这给注射器的针头进入留下了足够的空间（膨胀的血管壁会紧贴鼠尾的尾骨和鼠尾皮肤，中间形成一个由血充盈的液体空间），避免了针尖刺入时出现或进入血管的上面或刺穿血管进入到血管下面的现象。这种压赶方式还可以很好地固定住鼠尾，避免动物在感到刺痛时出现前窜，该设备带有可调式托尾架，能方便地调整到想要注射的部位并将其托住，使操作者下针坚实、稳定。同时托尾架上带有黃光透射灯（黃色光的波长透射到鼠尾静脉血管上时能被血管吸收，呈现出黑色），能清楚地看到鼠尾的静脉血管（特别是对黑鼠的尾部血管更显著 ），这给注射针尖的进入提供了深浅、方向和进针长度的依据。同时也能清楚地看到针是否已进入到血管内部，这比过去单凭感觉操作前进了一大步。设备是单人操作，手脚并用既方便又快捷，平均15秒内就能注射一只鼠。设备能调整工作角度能适合每个人的尾注习惯。可以这样说，使用了这种尾注设备，不管什么品系的实验用鼠，多么难打的鼠，都可做到一针见血，针针见血。静脉可视小鼠尾注固定器使用说明书

使用方法：一、 连接①接通电源：将电源适配器分别连接电源和仪器上，接通后主机面板处有绿色指示灯亮。②连接脚踏开关：将脚踏开关插头插接在主机箱上。③连接鼠尾透视灯：将l型鼠尾托板上的灯线插头插在主机箱相应的插座上，按动右侧面上的黄色按钮，黄色灯应亮。二、装鼠①快速装鼠筒的使用：快速装鼠筒一改过去那种小鼠钻入式的装鼠方式，（小鼠钻入式的装鼠方式首次使用还可以，动物在不知的情况下，很容易进入，但动物经过几次后知道进入的不适感觉，再让其进入就较困难了。）快速装鼠筒是后拉尾式装鼠方式，箕型的鼠筒前端能顺利地将鼠拉入筒内，为了避免鼠在筒内滚转身体，筒内安装了腹部限位块，能有效地限制小鼠身体在筒内翻转，小鼠被拉入筒后，可用前堵头将其堵在里面，前堵头的孔是根据小鼠头骨的生理曲线设计的，能有效地控制鼠的头部，但又不影响正常的呼吸，同时还能让小鼠的前肢找到一个舒适的位置，堵头的固定位置应以动物不能自由活动但又不影响动物肺部扩张，正常呼吸为准（通过透明的有机玻璃可观察调整）。②装好鼠的筒放置于主机上面板的滑槽上，鼠筒应侧放（因静脉血管在鼠尾的两侧），定位销进入定位孔，鼠尾通过开口的档板，将其放置在鼠尾挤压板下板的沟槽里，按动右侧面的黄色按钮，黄色灯亮，观察鼠尾血管是否摆正，再按一下黄色按钮，关闭黄灯，随后将挤压上板右转 90°压下，直到听到清脆的吸合声才可松手，此时鼠尾已被压住，按压时应缓慢加力，为让鼠尾根部的血液，有时间挤压到鼠尾的梢部，在下压的同时黄光灯自动点亮，这时可以根据黄光透射血管的情况调整黄光亮度旋钮，使血管达到最清楚（环境的亮度变化会影响血管的显现情况，建议在较暗的室内操作，应避开强光直射）。③注射位置的调整：不管使用多大的小鼠均应从鼠尾部的下1／3处进针，这样逐渐从下向上打可避开打过的针眼出现漏液现象。因使用动物的品系、大小不同，尾长度也不同，这样就需要调整注射时的位置，其方法是松开左边金属旋钮，拉动l型鼠尾托板至合适位置后旋紧即可。④放大镜的使用：放大镜是为了能更清楚地看到尾静脉血管和针头进入的情况（如视力很好也可拆掉不用），放大镜能进行角度位置的调整，可以适合不同视角的人，放大镜支架的上螺丝松开后可以改变放大镜的角度，松开下螺丝可以改变入视角的角度，支架转动的中轴可以在装鼠时放大镜暂时离开，总之放大镜的合理设计既方便了使用又不会影响到其它操作。⑤注射：注射使用的针头应在5号针以下，4.5或4号较为合适，过粗的针对血管损伤过大，用后止血困难。目前也有用头皮针后接1毫升注射器用的。这还是为了看回血情况来判断是否进入血管，不管用什么样的针，重要的一点是能看到血管，同时又能看到针在哪里了，这样注射就很容易了，针头进入血管后针头左右摆动一下看血管是否跟着动，这是判断进入血管的最好方法。确定针进入血管后，踏动脚踏开关，上挤压板上行左转90°打开，这时就可以将药物推入静脉，推入时应缓慢，避免动物出现充血性心衰，每次注射量不超过0.2ml。注射完成后应用棉球按压针孔处半分钟以上，避免皮下出血或药液回流，影响下次注射，备用鼠筒是为了提高效率轮换使用的。（如果动物样本大也可多购鼠筒）注意事项：                                                         ① 动物在被装筒捉持时会有应激反应，粪尿过多，应及时清理上板面和鼠筒内的粪便。②仪器不用时应及时拔掉电源，避免仪器过热损坏。仪器不可随意拆卸，如有问题请及时与厂家联系。